Наукові доповіді Національного університету біоресурсів і природокористування України

Індекс біологічної цінності м’яса курчат-бройлерів за експериментального випоювання антибіотику даноксан-50

С. Ткачук
Завантажити статтю
Анотація

Підтвердженням належної якості м'яса є рівень його біологічної цінності, амінокислотного складу після застосування антибіотиків під час лікування птиці. Вченими встановлено зворотну тенденцію в співвідношенні незамінних до замінних амінокислот у досліджуваних м'язах, а також визначено амінокислоту, яка є лімітуючою. Матеріалом дослідження були курчата-бройлери американського кросу "Кобб-500". Для проведення експерименту вони були розділені на 10 груп по 6 голів у кожній (1, 2, 3, 4, 5 – дослідні та 1, 2, 3, 4, 5 – контрольні. Дослідним групам птиці перорально задавали препарат Даноксан-50 у дозі 5 мг/кг впродовж 5 діб. Птиці контрольної групи випаювали очищену воду. Розраховували індекс біологічної цінності або амінокислотний СКОР (відношення СКОРа білка продукту до СКОРу білка еталона) за шкалою ФАО/ВООЗ. Для цього відбирали м'язи стегна (чотирьохголовий м'яз) і грудні (великий грудний). Встановлено, що лімітуючими амінокислотами в білках грудних м'язів і м'язів стегна курчат-бройлерів є лейцин і валін, оскільки показники амінокислотного СКОРу цих амінокислот є найнижчими, як в дослідній, так і в контрольних групах, упродовж періоду дослідження. Упродовж 5 діб випоювання антибіотика Даноксан-50 в м'ясі курчат-бройлерів містилася недостатня кількість лейцину та валіну, що знижує його біологічну цінність. Виробникам м'яса курчат-бройлерів, які лікують птицю цим антибіотиком, необхідно дотримуватись інструкції щодо його застосування, згідно з термінами каренції данофлоксацину мезилату – діючої речовини антимікробного препарату

Ключові слова

курчата-бройлери, Даноксан-50, грудні м'язи та м'язи стегна, амінокислотний СКОР

ЦИТУВАТИ
Tkachuk, S. (2021). Index of biological value of broiler chicken meat after experimental feeding of antibiotic danoxan-50. Scientific Reports of the National University of Life and Environmental Sciences of Ukraine, 17(6),177-187. https://doi.org/10.31548/dopovidi2021.06.015
Використані джерела
  1. Kopytets, N.H., & Voloshyn, V.M. (2020). Current state and trends of the meat market. Economics of Agro-Industrial Complex, 6, 59. https://doi.org/10.32317/2221-1055.202006059.
  2. Hojgard, S., & Faruk, K. (2012). Antibiotic resistance – why is the problem so difficult to solve? Infection Ecology and Epidemiology, 2(1), 18165. https://doi.org/10.3402/iee.v2i0.18165.
  3. Hutyi, B.V. (2011). Fluoroquinolones are a new generation of antibiotics and their use in the practice of veterinary medicine. Bulletin of Sumy National Agrarian University, 2, 35-39.
  4. Kedron, P., & Bagchi-Sen, S. (2012). Foreign direct investment in Europe by multinational pharmaceutical companies from India. Journal of Economic Geography, 12(4), 809-839. https://doi.org/10.1093/jeg/lbr044.
  5. Jabbar, A., & Rehman, S.U. (2013). Microbiological evaluation of antibiotic residues in meat, milk and eggs. Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences, 2(5), 2349-2354.
  6. Er Dermirhan, B., Onurdag, F.K., Dermirhan, B., Ozgacar, S.O., Oktem, A.B., & Abbasoglu, U. (2013). Screening of quinolone antibiotic residues in chicken meat and beef sold in the markets of Ankara, Turkey. Poultry Science, 92(8), 2212-2215. https://doi.org/10.3382/ps.2013-03072.
  7. Palyshniuk, K.Yu., & Tkachuk, S.A. (2013). Current state on the issue of the content of residual amounts of antimicrobial drugs in poultry products. Ukrainian Journal of Veterinary Sciences, 188. Retrieved from http://journals.nubip.edu.ua/index.php/Veterenarna/article/view/3400/3324.
  8. Schweihofer, J.P. (2013). Antibiotic residue testing in meat results in few positive samples. Michigan State University Extension. Retrieved from https://www.canr.msu.edu/news/antibiotic_residue_testing_in_meat_results_in_few_positive_sample.
  9. Zotte, A.D., Gleeson, E., Franco, D., Cullere, M., & Lorenzo, J.M. (2020). Proximate composition, amino acid profile, and oxidative stability of slow-growing indigenous chickens compared with commercial broiler chickens. Foods, 9(5), 546. https://doi.org/10.3390/foods9050546.
  10. El-Tarabany, M.S., & Ahmed-Farid, O.A. (2021). Effect of age at the onset of natural molting on carcass traits, muscle oxidative stability, and amino acid and fatty acid profiles in commercial laying hens. LWT - Food Science and Technology, 147, 111627. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2021.111627.
  11. Gkarane, V., Ciulu, M., Altmann, B.A., Schmitt, A.O., & Mörlein, D. (2020). Effect of algae or insect supplementation as alternative protein sources on the volatile profile of chicken meat. Foods, 9(9), 1235. https://doi.org/10.3390/foods9091235.
  12. de Souza Vilela, J., Alvarenga, T.I.R.C., Andrew, N.R., McPhee, M., Kolakshyapati, M., Hopkins, D.L., & Ruhnke, I. (2021). Technological quality, amino acid and fatty acid profile of broiler meat enhanced by dietary inclusion of black soldier fly larvae. Foods, 10(2), 297. https://doi.org/10.3390/foods10020297.
  13. El-Tarabany, M.S., Ahmed-Farid, O.A., Nassan, M.A., & Salah, A.S. (2021). Oxidative stability, carcass traits and muscle fatty acid and amino acid profiles in heat-stressed broiler chickens. Antioxidants, 10(11), 1725. https://doi.org/10.3390/antiox10111725.
  14. Bozhko, N.V., Tyshchenko, V.I., & Pasichnyi, V.M. (2020). Research of consumer and biological value of meat-containing cut semi-finished products. Scientific Works of NUKhT, 26(1), 135-141.
  15. Zabarna, I.V., & Usachenko, N.V. (2018). Toxicobiological evaluation of broiler slaughter products in the case of pharmazine and tylocycline. Veterinary Biotechnology, 32(2), 163-175.
  16. Krishtafovich, V.I., Zhebeleva, I.A., Zaikini, V.I., & Pambuhchiyanc, V.I. (2012). Commodity science and examination of food products: Guidelines. Moscow: Dashkov i K.
  17. Fursik, O.P., Strashynskyi, I.M., & Pasichnyi, V.M. (2016). Determination of amino acid composition and microbiological parameters of cooked sausages. Scientific Bulletin of LNUVMBT Named after S.Z. Gzhytsky, 18(2), 115-120.
  18. Shvediuk, D.A., Pasichnyi, V.M., Radziievska, I.H., & Matsuk, Yu.A. (2017). Amino acid composition and biological value of meat semi-finished products using vegetable raw materials and protein-fat emulsions. Scientific Bulletin of LNUVMB Named after S.Z. Gzhytsky, 19(80), 111-114. https://doi.org/10.15421/nvlvet8023.
  19. Brosnan, J.T., & Brosnan, M.E. (2006). Branched-chain amino acids: Enzyme and substrate regulation. Journal of Nutrition, 136(1), 207-211. https://doi.org/10.1093/jn/136.1.207S.
  20. Chen, X., Xiang, L., Jia, G., Liu, G., Zhao, H., & Huang, Z. (2019). Leucine regulates slow-twitch muscle fibers expression and mitochondrial function by Sirt1/AMPK signaling in porcine skeletal muscle satellite cells. Animal Science Journal, 90(2), 255-263. https://doi.org/10.1111/asj.13146.
  21. Imanari, M., Kadowaki, M., & Fujimura, S. (2007). Regulation of taste-active components of meat by dietary leucine. British Poultry Science, 48(2), 167-176. https://doi.org/10.1080/00071660701244738.
  22. Kop-Bozbay, C., Akdag, A., Atan, H., & Ocak, N. (2021). Response of broilers to supplementation of branched-chain amino acids blends with different valine contents in the starter period under summer conditions. Animal Bioscience, 34(2), 295-305. https://doi.org/10.5713/ajas.19.0828.
  23. Tavernari, F.K., Lelis, G.R., Vieira, R.A., Rostagno, H.S., Albino, L.F.T., & Neto, A.R.O. (2013). Valine needs in starting and growing Cobb (500) broilers. Poultry Science, 92(1), 151-157. https://doi.org/10.3382/ps.2012-02278.