Наукові доповіді Національного університету біоресурсів і природокористування України

Поширені причини аборту у корів

Б. Нижник, О. Вальчук, Т. Катаєва, Д. Древаль, І. Деркач
Завантажити статтю
Анотація

Метою цього дослідження є визначення етіології абортів у корів. Дослідження проводили в період з 2019 по 2022 рр. Було досліджено 162 випадки аборту з 65 господарств із 14 областей України. У дослідженні використовували патологоанатомічний, гістологічний, бактеріологічний та молекулярно-генетичний методи. Етіологічний діагноз встановлений у 24,07 %, імовірний етіологічний діагноз – у 29,01 % та діагноз, аборт невизначеної етіології – у 46,91 % випадках. Аборт зі встановленою етіологією у 30,77 % випадків був викликаний бактеріями, у 10,26 % – вірусами, у 28,21 % – найпростішим та у 30,77 % – змішаною інфекцією. Аборт зі встановленою імовірною етіологією у 10,64 % випадків був викликаний бактеріями, у 25,53% – вірусами, у 34,04 % – найпростішим та у 29,79 % – змішаною інфекцією. Найпоширенішими інфекційними агентами є: BHV-4 виявлений у 11, N. Caninum – у 9, та Coxiella burnetii – у 6 областях країни. Також були виділені зоонозні патогени – Leptospira spp., Coxiella burnetii, Salmonella spp., Campylobacter fetus, Listeria monocytogenes. Neospora caninum – найпоширеніша причина аборту великої рогатої худоби. Серед паталогоанатомічних змін найчастіше реєстрували: набряк плаценти, іктеричність печінки, нерівномірно забарвлена печінка, гіперемія головного мозку, множинні смужки білого кольору в скелетних м’язах, осередки сіро-білого кольору в печінці, крововиливи на/у внутрішніх органах, плацентит. Також значна частина плодів і/або плацент були в стані автолізу. Основними патогістологічними змінами були: енцефаліт, гліоз, перикардит, міокардит, ендокардит, міозит, гепатит, пневмонія, плацентит. Патологоанатомічне та патогістологічне дослідження плода та плаценти має важливе значення для встановлення етіології аборту

Ключові слова

аборт, велика рогата худоба, діагностика, антропозоонози, BHV-4, Salmonella spp., Coxiella burnetii, Neospora caninum, Campylobacter fetus, Leptospira spp

ЦИТУВАТИ
Nyzhnyk, B., Valchuk, O., Kataieva, T., Dreval, D., & Derkach, I. (2024). Common causes of abortion in cows. Scientific Reports of the National University of Life and Environmental Sciences of Ukraine, 20(1). https://doi.org/10.31548/dopovidi.1(107).2024.020
Використані джерела

[1] Van Loo, H., Pascottini, O.B., Ribbens, S., Hooyberghs, J., Pardon, B., & Opsomer, G. (2021). Retrospective study of factors associated with bovine infectious abortion and perinatal mortality. Preventive Veterinary Medicine, 191, article number 105366. doi: 10.1016/j.prevetmed.2021.105366.

[2] Moore, D.P., Cantón, G.J., & Louge Uriarte, E.L. (2021). Editorial: Infectious diseases affecting reproduction and the neonatal period in cattle. Frontiers in Veterinary Science, 8. doi: 10.3389/fvets.2021.679007.

[3] Mee, J.F. (2023). Review‐ESDAR 2023 invited review: Bovine abortion – incidence, risk factors and causes. Reproduction in Domestic Animals. doi: 10.1111/rda.14366.

[4] Yadav, R., Yadav, P., Singh, G., Kumar, S., Dutt, R., & Pandey, A. (2021). Non-infectious causes of abortion in livestock animals - A review. International Journal of Livestock Research, 11(2), 1-13.

[5] Jonker, F. (2004). Fetal death: Comparative aspects in large domestic animals. Animal Reproduction Science, 82-83, 415-430. doi: 10.1016/j.anireprosci.2004.05.003.

[6] Wolf-Jäckel, G.A., Strube, M.L., Schou, K.K., Schnee, C., Agerholm, J.S., & Jensen, T.K. (2021). Bovine abortions revisited – enhancing abortion diagnostics by 16S rDNA amplicon sequencing and fluorescence in situ hybridization. Frontiers in Veterinary Science, 8, article number 623666. doi: 10.3389/fvets.2021.623666.

[7] Reichel, M.P., Wahl, L.C., & Hill, F.I. (2018). Review of diagnostic procedures and approaches to infectious causes of reproductive failures of cattle in Australia and New Zealand. Frontiers in Veterinary Science, 5. doi: 10.3389/fvets.2018.00222.

[8] Wani, A.K., Hashem, N.M., Akhtar, N., Singh, R., Madkour, M., & Prakash, A. (2022). Understanding microbial networks of farm animals through genomics, metagenomics and other meta-omic approaches for livestock wellness and sustainability. Annals of Animal Science, 22(3), 839-853. doi: 10.2478/aoas-2022-0002.

[9] Jonker, A., & Michel, A. (2020). Retrospective study of bacterial and fungal causes of abortion in domestic ruminants in northern regions of South Africa (2006-2016). Australian Veterinary Journal, 99(3), 66-71. doi: 10.1111/avj.13035.

[10] Vidal, S., Kegler, K., Posthaus, H., Perreten, V., & Rodriguez-Campos, S. (2017). Amplicon sequencing of bacterial microbiota in abortion material from cattle. Veterinary Research, 48(1), article number 64. doi: 10.1186/s13567-017-0470-1.

[11] Wolf-Jäckel, G.A., et al. (2020). Diagnostic studies of abortion in Danish cattle 2015-2017. Acta Veterinaria Scandinavica, 62(1), 1. doi: 10.1186/s13028-019-0499-4.

[12] Kaplan, M., Çağırgan, A.A., Pekmez, K., Arslan, F., & Kalaycı, G. (2022). Survey of four important viruses causing abortion in cattle in Aegean Region. Eurasian Journal of Veterinary Sciences, 38(2), 101-107. doi: 10.15312/eurasianjvetsci.2022.370.

[13] Sodoma, E., Mitterhuemer, S., Krassnig, G., Stellnberger, K., Reisp, K., Schmoll, F., & Dünser, M. (2019). Infektiös bedingte Aborte beim Rind – eigene Erfahrungen und Untersuchungen aus dem Jahr 2018 (Januar-September). Tierärztliche Praxis Ausgabe G: Großtiere / Nutztiere, 47(03), 143-150. doi: 10.1055/a-0896-0945.

[14] Macías-Rioseco, M., et al. (2020). Causes of abortion in dairy cows in Uruguay. Pesquisa Veterinária Brasileira, 40(5), 325-332. doi: 10.1590/1678-5150-pvb-6550.

[15] Seyedmousavi, S., et al. (2018). Fungal infections in animals: A patchwork of different situations. Medical Mycology, 56(suppl_1), S165-S187. doi: 10.1093/mmy/myx104.

[16] Gupta, A., & Pratap Singh, N. (Eds.). (2021). Fungal diseases in animals. Cham: Springer International Publishing. doi: 10.1007/978-3-030-69507-1.

[17] Botta, C., et al. (2019). Bovine fetal placenta during pregnancy and the postpartum period. Veterinary Pathology, 56(2), 248-258. doi: 10.1177/0300985818806453.

[18] Cantón, G.J., et al. (2022). Spatial-temporal trends and economic losses associated with bovine abortifacients in central Argentina. Tropical Animal Health and Production, 54(4), article number 242. doi: 10.1007/s11250-022-03237-0.

[19] Mee, J. F. (2016). A practitioner’s guide to post-mortem examination of an aborted or stillborn calf. Livestock, 21(1), 38-43. doi: 10.12968/live.2016.21.1.38.

[20] Kumar, C.U., Mahajan, V., Leishangthem, G.D., & Bal, M.S. (2022). Pathological and molecular studies on diagnosis of infectious bovine abortions. Indian Journal of Veterinary Pathology, 46(2), 111-115. doi: 10.5958/0973-970x.2022.00018.9.

[21] Hecker, Y.P., González-Ortega, S., Cano, S., Ortega-Mora, L.M., & Horcajo, P. (2023). Bovine infectious abortion: A systematic review and meta-analysis. Frontiers in Veterinary Science, 10. doi: 10.3389/fvets.2023.1249410.

[22] Agerholm, J.S. (2013). Coxiella burnetii associated reproductive disorders in domestic animals – a critical review. Acta Veterinaria Scandinavica, 55(1), article number 13. doi: 10.1186/1751-0147-55-13.

[23] Cvetojević, D., et al. (2016). Prevalence of Bovine herpesvirus type 4 in aborting dairy cows. Polish Journal of Veterinary Sciences, 19(4), 731-736. doi: 10.1515/pjvs-2016-0092.

[24] Headley, S.A., et al. (2022). Detection of bovine gammaherpesvirus 6 in tissues of aborted fetuses from dairy cows concomitantly infected by Histophilus somni. Microbial Pathogenesis, 169, article number 105621. doi: 10.1016/j.micpath.2022.105621.