Наукові доповіді Національного університету біоресурсів і природокористування України

Особливості генеративного розмноження рослин роду Cercis L.

Олександр Бабин, Андрій Пінчук
Завантажити статтю
Анотація

Проблема складного пророщування насіння Cercis L., зумовлена його фізіологічним і фізичним станом спокою, потребує удосконалення методів генеративного розмноження з використанням стимуляторів росту. В даній статті розглядався вплив органо-мінеральних стимуляторів росту на ефективність проростання насіння дослідних видів, а також подальший вплив на морфометричні показники сіянців. Ґрунтова схожість визначалась шляхом прямого підрахунку схожого насіння, а лабораторна схожість визначалась згідно методики визначення посівних якостей насіння International Seed Testing Association (ISTA). Статистична обробка даних проводилась за допомогою MS Excel (однофакторний дисперсійний аналіз ANOVA та Standard Deviation) У результаті проведених досліджень виявлено статистично значущий вплив апробованих препаратів на ефективність проростання насіння. Встановлено, що найкращий вплив на схожість насіння Cercis siliquastrum ‘Alba’ має «Бурштинова кислота» в концентрації 1 г/л. Позитивний вплив на проростання насіння Cercis canadensis L. мали препарати «Megafol» в концентрації 5,0 мл/л (схожість варіювалась в межах 70-77 %), а також «Альга 600» в концентрації 1,25 г/л (схожість варіювалась в межах 50-70 %). Окрім цього дослідним шляхом встановлено, що сіянці, насіння яких було оброблено стимуляторами росту мали вищі показники приростів, ніж контрольний зразок. При обробці насіння препаратом «Бурштинова кислота» сіянці Cercis siliquastrum ‘Alba’ збільшились в 2,5-2,9 рази. Динаміка приростів сіянців Cercis canadensis L., насіння яких оброблене препаратом «Бурштинова кислота» збільшились майже вдвічі. Вплив препарату «Radifarm» в концентрації 5,0 мл/л на динаміку сіянців Cercis canadensis L. проявився у збільшенні висоти в майже в 1,6 рази

Ключові слова

насіннєве розмноження, іудине дерево, сіянці, стимулятори росту, схожість

ЦИТУВАТИ
Babyn, O., & Pinchuk, A. (2025). Features of generative reproduction in plants of the genus Cercis L.. Scientific Reports of the National University of Life and Environmental Sciences of Ukraine, 21(2),134-147. https://doi.org/10.31548/dopovidi/2.2025.134
Використані джерела
  1. Anderson, L., & Milberg, P. (1998). Variation in seed dormancy among mother plants, populations and years of seed collection. Seed Science Research, 8, 29-38. doi: 10.1017/S0960258500003883.
  2. Babyn, O., Pinchuk, A., Derii, A., Boyko, O., & Likhanov, A. (2024). Influence of urban environment factors on morphometric parameters and accumulation of secondary metabolites in Cercis canadensis L. and Cercis siliquastrum “Alba”. Ukrainian Journal of Forest and Wood Science, 15(1), 8-24. doi: 10.31548/forest/1.2024.08.
  3. Bewley, J.D., & Black, M. (1985). Seed: Physiology of development and germination. Heidelberg: Springer Science+Business Media.
  4. Chattha, F.A., Kousar, S., Naeem, F., & Ahmad, S. (2025). Connotation of plant growth regulators on seed germination. Journal of Experimental Agriculture International, 47(1), 343-356. doi: 10.9734/jeai/2025/v47i13236.
  5. Convention on Biological Diversity. (1992, June). Retrieved from https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/995_030#Text
  6. Demel, T. (1996). Germination ecology of twelve indigenous and eight exotic multipurpose leguminous species from Ethiopia. Forest Ecology and Management, 80, 209-223. doi: 10.1016/0378-1127(95)03616-4.
  7. Fernandez, H., Doumas, P., & Bonnet-Masimbert, M. (1997). Quantification of GA₁, GA₃, GA₄, GA₇, GA₈, GA₉, GA₁₉ and GA₂₀; and GA₂₀ metabolism in dormant and nondormant beechnuts. Plant Growth Regulation, 22(1), 29-35. doi: 10.1023/A:1005814926549.
  8. Frett, J.L., & Dirr, M.A. (1979). Scarification and stratification requirements for seed of Cercis canadensis L. (redbud), Cladrastis lutea (Michx. f.) C. Koch (yellowwood), and Gymnocladus dioicus (L.) C. Koch (Kentucky coffee tree). Plant Propagator, 25(2), 4-6.
  9. Garg, F.C. (2024). Role of microorganisms in seed germination. In New perspectives on seed germination. IntechOpen. doi: 10.5772/intechopen.1006270.
  10. Gebre, G.H., & Karam, N.S. (2004). Germination of Cercis siliquastrum seeds in response to gibberellic acid and stratification. Seed Science and Technology, 32(1), 255-260. doi: 10.15258/sst.2004.32.1.29.
  11. Grbić, M., Skočajić, D., Đukić, M., Đunisijević-Bojović, D., Obratov-Petković, D., & Bjedov, I. (2014). Breaking of Judas tree seed dormancy by plant hormone treatments. Glasnik Šumarskog Fakulteta, 109, 73-84. doi: 10.2298/GSF1409073G.
  12. International Seed Testing Association. (2025). International rules for seed testing. Bassersdorf: International Seed Testing Association. doi: 10.15258/istarules.2025.F.
  13. Koldar, L.A. (2003). Features of ornamental planting material formation of Cercis species by transplanting. Introduction of Plants, 1-2, 113-116.
  14. Liu, N.Y., Khatamian, H., & Freta, T.A. (1981). Seed coat structure of three woody legume species after chemical and physical treatments to increase seed germination. Journal of the American Society for Horticultural Science, 106(5), 691-694. doi: 10.21273/JASHS.106.5.691.
  15. Martinuzzi, R., Gastaldo, P., Profumo, P., & Riggio Bevilacqua, L. (1985). Bound ferulic acid in the endosperm of Cercis siliquastrum L. Plant Science, 38(1), 41-46. doi: 10.1016/0168-9452(85)90077-9.
  16. Müller, K., Tintelnot, S., & Leubner-Metzger, G. (2006). Endosperm-limited Brassicaceae seed germination: Abscisic acid inhibits embryo-induced endosperm weakening of Lepidium sativum (cress) and endosperm rupture of cress and Arabidopsis thaliana. Plant and Cell Physiology, 47(6), 864-877. doi: 10.1093/pcp/pcj059.
  17. Nimavat, N., & Parikh, P. (2024). Innovations in Date palm (Phoenix dactylifera L.) micropropagation: detailed review of in vitro culture methods and plant growth regulator applications. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 159, article number 6. doi: 10.1007/s11240-024-02866-7.
  18. Orozco-Almanza, M.S., Leon-Garcia, L.P., Grether, R., & Garcia-Moya, E. (2003). Germination of four species of the genus Mimosa (Leguminosae) in a semi-arid zone of Central Mexico. Journal of Arid Environments, 55, 75-92. doi: 10.1016/S0140-1963(02)00265-3.
  19. Pieraccini, R., Whatley, L., Koedam, N., Vanreusel, A., Dolch, T., Dierick, J., & Van der Stocken, T. (2025). Gibberellic acid and light effects on seed germination in the seagrass Zostera marina. Physiologia Plantarum, 177(2), article number e70137. doi: 10.1111/ppl.70137.
  20. Pipinis, E., Milios, E., Smiris, P., & Gioumousidis, C. (2011). Effect of acid scarification and cold moist stratification on the germination of Cercis siliquastrum L. seeds. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 35(3), 259-264. doi: 10.3906/tar-1003-848.
  21. Profumo, P., Gastaldo, P., & Martinuzzi, R. (1979). On the inhibiting action of the endosperm on the seed germination of Cercis siliquastrum. Experientia, 35(11), 1452-1453. doi: 10.1007/BF01962777.
  22. Rosner, L.S., Harrington, J.T., Dreesen, D.R., & Murray, L. (2003). Sulfuric acid scarification of wax currant seeds from New Mexico. Native Plants Journal, 4, 65-71. doi: 10.3368/npj.4.1.65.
  23. Szymajda, M., & Maciorowski, R. (2025). Seed preparation methods for increasing the germination of sour cherry (Prunus cerasus L.). Forests, 16(3), article number 516. doi: 10.3390/f16030516.
  24. Tipton, J. L. (1992). Requirements for seed germination of Mexican redbud, evergreen sumac, and mealy sage. HortScience, 27, 313-316.
  25. Wang, X., Kubenka, K., Hilton, A., Chatwin, W., Cox, T., & Shu, S. (2025). The effects of freezing and stratification on pecan (Carya illinoinensis) seed germination and seedling growth. Technology in Horticulture, 5, article number e002. doi: 10.48130/tihort-0024-0030.
  26. Zencirkıran, M., Tümsavaş, Z., & Ünal, H. (2010). The effects of different acid treatment and stratification duration on germination of Cercis siliquastrum L. seeds. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 38(1), 159-163.
  27. Zhou, R., Boboev, M., Kurbonova, P., Li, W.J., & Lu, T. (2025). Seed germination of the medicinal plant Ferula gigantea. Seed Science and Technology, 53(1), 17-21. doi: 10.15258/sst.2025.53.1.03.