Актуальність проведених досліджень обумовлена відсутністю у доступній літературі відомостей щодо впливу наночастинок феруму та германію на показники обміну ліпідів в плазмі крові свиноматок. Метою роботи було встановити вплив задавання наночастинок феруму та германію на показники обміну ліпідів у крові свиноматок до та після опоросу. Експеримент проведено на 24 свиноматках великої білої породи, віком 2-3 роки, яких було розділено на дві групи (контрольна і дослідна). Свиням дослідної групи за 10 діб до опоросу, протягом десяти діб випоювали комплекс наносполук мікроелементів феруму – 3 мг/добу та германію – по 0,01 мг/добу. Матеріалом для досліджень плазма крові тварин у якій визначали окремі показники обміну ліпідів. Встановлено вплив опоросу на вміст триацилгліцеролів, неетерифікованих жирних кислот та загального холестеролу в плазмі крові тварин (F= 33,0–156,0 > FU=2,9; Р < 0,001). Перед опоросом у свиноматок відбувається перебудова ліпідного обміну, що характеризується зменшенням вмісту триацилгліцеролів, загального холестеролу та зростанням вмісту неетерифікованих жирних кислот в плазмі крові. Встановлено, що протягом доби до опоросу вміст триацилгліцеролів зменшується на 30,6 % (P≤0,001), загального холестеролу на 18,3 % (P≤0,01), а неетерифікованих жирних кислот зростає у 1,5 раза (P≤0,001). Здавання наносполук феруму та германію достовірно впливає на вміст триацилгліцеролів (ղ²ᵪ=0,53; P≤0,05), загального холестеролу (ղ²ᵪ=0,69; P≤0,01) та неетерифікованих жирних кислот (ղ²ᵪ=0,50; P≤0,05) в плазмі крові свиноматок лише в день опоросу. У цей час в крові свиноматок, яким задавали наносполуки металів, вміст триацилгліцеролів та загального холестеролу більший на 23,7 % (P≤0,05) та 11,5 % (P≤0,01) відповідно, а вміст неетерифікованих жирних кислот менше на 9,2 % (P≤0,05) за показники тварин контрольної групи. Перспективи подальших досліджень полягають у розробці сучасних способів підвищення продуктивності та резистентності свиноматок за допомогою наночасток металів
свині, наносполуки металів, триацилгліцероли, загальний холестерол, неетерифіковані жирні кислоти
[1] van den Bosch, M., Soede, N., Kemp, B., & van den Brand, H. (2023). Sow nutrition, uterine contractions, and placental blood flow during the peri-partum period and short-term effects on offspring: A review. Animals, 13(5), article number 910. doi: 10.3390/ani13050910.
[2] Feyera, T., Pedersen, T.F., Krogh, U., Foldager, L., & Theil, P.K. (2018). Impact of sow energy status during farrowing on farrowing kinetics, frequency of stillborn piglets, and farrowing assistance. Journal of Animal Science, 96(6), 2320-2331. doi: 10.1093/JAS/SKY141.
[3] Borisevich, V.B., & Kaplunenko, V.G. (Esd.). (2009). Nanotechnology in veterinary medicine. Kyiv: Nanomaterials and Nanotechnologies LLC.
[4] Morris, D.L., Brown-Brandl, T.M., Hales, K.E., Harvatine, K.J., & Kononoff, P.J. (2020). Effects of high-starch or high-fat diets formulated to be isoenergetic on energy and nitrogen partitioning and utilization in lactating Jersey cows. Journal of Dairy Science, 103(5), 4378-4389. doi: 10.3168/jds.2019-17638.
[5] Abbassi-Ghanavati, M., Greer, L.G., & Cunningham, F.G. (2009). Pregnancy and laboratory studies: A reference table for clinicians. Obstetrics & Gynecology, 114(6), 1326-1331. doi: 10.1097/aog.0b013e3181c2bde8.
[6] Panarotto, D., Remillard, P., Bouffard, L., & Maheux, P. (2002). Insulin resistance affects the regulation of lipoprotein lipase in the postprandial period and in an adipose tissue‐specific manner. European Journal of Clinical Investigation, 32(2), 84-92. doi: 10.1046/j.1365-2362.2002.00945.x.
[7] Bourebaba, L., Kępska, M., Qasem, B., Zyzak, M., Łyczko, J., Klemens, M., Mularczyk, M., & Marycz, K. (2023). Sex hormone-binding globulin improves lipid metabolism and reduces inflammation in subcutaneous adipose tissue of metabolic syndrome-affected horses. Frontiers in Molecular Biosciences, 10, article number 1214961. doi: 10.3389/fmolb.2023.1214961.
[8] Ikeoka, D., & Krusinova, E. (2009). Insulin resistance and lipid metabolism. Revista Da Associação Médica Brasileira, 55, article number 234. doi: 10.1590/S0104-42302009000300003.
[9] Garduño-Alanís, A., Vázquez-de Anda, G., Valdés-Ramos, R., Talavera, J.O., Herrera-Villalobos, J.E., Huitrón-Bravo, G.G., & Hernández-Garduño, E. (2015). Predictors of hyperlipidemia during the first half of pregnancy in Mexican women. Nutrición Hospitalaria, 31(1), 508-513. doi: 10.3305/nh.2015.31.1.7608.
[10] McMullin, T.S., Lowe, E.R., Bartels, M.J., & Marty, M.S. (2008). Dynamic changes in lipids and proteins of maternal, fetal, and pup blood and milk during perinatal development in CD and Wistar rats. Toxicological Sciences, 105(2), 260-274. doi: 10.1093/toxsci/kfn124.
[11] Vlizlo, V.V. (Ed.). (2012). Laboratory methods of research in biology, animal husbandry and veterinary medicine : A handbook. Lviv: Spolom.
[12] Wang, W., Yu, Z., Yin, X., Wang, Z., Xu, S., Shi, C., Zang, J., Liu, H., & Wang, F. (2023). Effect of dietary starch-to-fat ratio on lipid metabolism, inflammation, and microbiota of multiparous sow and newborn piglets. Agriculture, 13(5), article number 1069. doi: 10.3390/AGRICULTURE13051069.
[13] Costermans, N.G., Teerds, K.J., Kemp, B., Keijer, J., & Soede, N.M. (2023). Physiological and metabolic aspects of follicular developmental competence as affected by lactational body condition loss. Molecular Reproduction and Development, 90(7), 491-502. doi: 10.1002/mrd.23628.