Продукція ракоподібних має позитивний, динамічний попит серед населення країни. М'ясо раків є ефективним джерелом незамінних амінокислот та інших біологічно активних речовин для організму людини. Важливим елементом в технології вирощування раків є їх годівля. Інтенсивність росту раків Сherax quadricarinatus залежить від вмісту та походження білка у їх раціонах. Ефективним джерелом білка для раків може бути біомаса гібрида червоних каліфорнійських черв’яків. Проте невивченим залишається питання щодо встановлення ефективності використання у складі раціонів для раків біомаси вермикультури вирощеної на субстраті із вмістом посліду курчат-бройлерів ферментованого за активної аерації. Метою роботи є дослідження впливу оптимального вмісту біомаси вермикультури у раціонах на прирости раків та показники вмісту HS-груп у їх печінці. Для досягнення запланованої мети в умовах дослідного господарства Білоцерківського національного аграрного університету ракам із І, ІІ та ІІІ дослідної групи згодовували стандартні раціони із вмістом 10,0; 15,0 та 20,0 % біомаси каліфорнійських черв’яків. Ракам із контрольної групи давали стандартні раціони (повнораціонний комбікорм + листя дуба). Уміст сульфогідрильних груп у гомогенаті із печінки Сherax quadricarinatus визначали за допомогою методики Ellman G.L. Доведено, що за згодовування раціонів із вмістом 20,0 % біомаси вермикультури маса тіла раків збільшується на 7,0 % відносно контролю. Найбільша маса тіла Сherax quadricarinatus на кінець досліду була встановлена у групі де використовувався раціон із вмістом 15,0 % біомаси каліфорнійських черв’яків. Різниця із контролем становила 8,2 %. Встановлено підвищення збереження раків на 8,0 % за згодовування їм 15,0 та 20,0 % біомаси вермикультури. Застосування біомаси черв’яків сприяє підвищенню середньодобових і абсолютних приростів раків та не викликає зниження вмісту сульфогідрильних груп у їх печінці. Перспективним для подальшого вивчення є дослідження хімічного складу м’язової тканини раків за згодовування їм раціонів із вмістом біомаси вермикультури
раки Сherax quadricarinatus, раціон, маса тіла, прирости, біомаса червоних каліфорнійських черв’яків
[1] Jones, C.M., & Valverde, C. (2020). Development of mass production hatchery technology for the red claw crayfish Cherax quadricarinatus. Freshwater Crayfish, 25(1), 1-6. doi: 10.5869/fc.2020.v25-1.001.
[2] Zharchynska, V., & Hrynevych, N. (2023). Aquaculture indicators of young Cherax quadricarinatus under various feeding plans. Scientific Horizons, 26(9), 61-69. doi: 10.48077/scihor9.2023.61.
[3] Nanda, P.K., Das, A.K., Dandapat, P., Dhar, P., Bandyopadhyay, S., Dib, A.L., Lorenzo, J.M., & Gagaoua, M. (2021). Nutritional aspects, flavour profile and health benefits of crab meat-based novel food products and valorisation of processing waste to wealth: A review. Trends in Food Science and Technology, 112, 252-267. doi: 10.1016/j.tifs.2021.03.059.
[4] Vecchioni, L., Marrone, F., Chirco, P., Arizza, V., Tricarico, E., & Arculeo, M. (2022). An update of the known distribution and status of Cherax spp. in Italy (Crustacea, Parastacidae). BioInvasions Records, 11(4), 1045-1055.
[5] Zharchynska, V.S., & Hrynevych, N.Ie. (2022). Udoskonalennia tekhnolohii pidroshchennia rakopodibnykh na prykladi chervono-kleshnevoho raka Cherax quadricarinatus. Naukovyi Visnyk Lvivskoho Natsionalnoho Universytetu Veterynarnoi Medytsyny ta Biotekhnolohii imeni S.Z. Gzhytskoho. Seriia: Silskohospodarski Nauky, 24(96), 16-23.
[6] Azhar, M.H., et al. (2020). Biofloc-based co-culture systems of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) and redclaw crayfish (Cherax quadricarinatus) with different carbon–nitrogen ratios. Aquaculture International, 28, 1293-1304.
[7] Kukhtyn, M., Salata, V., Berhilevych, O., Malimon, Z., Tsvihun, A., Gutyj, B., & Horiuk, Y. (2020). Evaluation of storage methods of beef by microbiological and chemical indicators. Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences, 14, 602-611. doi: 10.5219/1381.
[8] Crandall, K.A., & Grave, S.D. (2017). An updated classification of the freshwater crayfishes (Decapoda: Astacidea) of the world, with a complete species list. Journal of Crustacean Biology, 37(5), 615-653. doi: 10.1093/jcbiol/rux070.
[9] Sun, Y., Shan, X., Li, D., Liu, X., Han, Z., Qin, J., Guan, B., Tan, L., Zheng, J., Wei, M., & Jia, Y. (2023). Analysis of the differences in muscle nutrition among individuals of different sexes in redclaw crayfish, Cherax quadricarinatus. Metabolites, 13(2), article number 190. doi: 10.3390/metabo13020190.
[10] Haubrock, P.J., Oficialdegui, F.J., Zeng, Y., Patoka, J., Yeo, D.C.J., & Kouba, A. (2021). The redclaw crayfish: A prominent aquaculture species with invasive potential in tropical and subtropical biodiversity hotspots. Reviews in Aquaculture, 13(3), 1488-1530. doi: 10.1111/raq.12531.
[11] Hou, S., Li, J., Zhang, Y., Huang, J., Wu, X., & Cheng, Y. (2021). Effects of fish meal replacement with protein mixtures on growth, gonad development and amino acid composition of pre-adult red swamp crayfish, Procambarus clarkii (Girard, 1852) (Decapoda, Cambaridae). Crustaceana, 94(10), 1161-1186. doi: 10.1163/15685403-bja10150.
[12] Hatti Shankerappa, S. (2013). Chemical composition like protein, lipid and glycogen of local three species of earthworms of Gulbarga city, Karnataka, India. International Journal of Advancements in Research and Technology, 2(7), 73-97.
[13] Kononenko, V.K., Ibatullin, I.I., & Patrov, V.S. (2000). Practicum on the fundamentals of scientific research in animal husbandry. Kyiv.
[14] Hrynevych, N.E., Zharchynska, V.S., Svitelskyi, M.M., Khomiak, O.A., & Sliusarenko, A.O. (2022). Promising object of aquaculture of crustaceans Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1868): Biology, technology (review). Aquatic Bioresources and Aquaculture, 1, 47-62. doi: 10.32851/wba.2022.1.4.
[15] Ellman, G.L. (1959). Tissue sulfhydryl groups. Archives of Biochemistry and Biophysics, 82(1), 70-77.