Наукові доповіді Національного університету біоресурсів і природокористування України

Вплив різних методів лікування на показники синовіальної рідини за експериментального остеоартрозу в кролів

І. Горкава, М. Малюк
Завантажити статтю
Анотація

Ветеринарні фахівці активно вивчають проблему остеоартрозів у тварин (коні, собаки, коти, кролі) і методів її подолання. На даний період існують класичні схеми лікування, які дають позитивні результати, а також активно впроваджується у ветеринарну практику – використання плазми, збагаченої тромбоцитами (PRP). У зв’язку з цим дослідження викладені в цій статті були спрямовані на застосування ефективності та оцінки змін у тварин з експериментальним остеоартрозом колінного суглобу нестероїдних протизапальним препаратів у поєднанні з хондроїтином і глюкозаміном (класична схема лікування) та плазми збагаченої тромбоцитам. Матеріалом дослідження була синовіальна рідина отримана від тварин з експериментально сформованим остеоартрозом колінного суглобу на 7, 14, 21 та 28 доби після початку лікування з використанням двох різних методів. У тварин дослідної групи (класична схема лікування) на 7 му добу відмічали зменшення кількості нейтрофілів на 31 %, еозинофілів на 12,5 %, кількість лімфоцитів збільшилась на 31,3 %, а макрофагів зменшилась 7 %. Показник кількості лімфоцитів збільшився на 7,3 %, в порівнянні з вихідним станом. На 14 ту добу кількість нейтрофілів знизилась на 61,5 %, еозинофілів на 45 %, макрофагів на 37,9 %, а кількість лімфоцитів збільшились на 4,5 % у порівнянні із 7 добою. На 21 добу кількість нейтрофілів зменшилась на 46,7 %, еозинофілів на 39,4 %, макрофагів на 51 %, показник кількості лімфоцитів збільшився на 10,9 % відносно 14 доби. На 28 му добу відмічали у зразках синовіальної рідини поодинокі нейтрофіли, еозинофіли, макрофаги, що відповідає фізіологічній нормі складу синовіальної рідини. Воднчас показник кількості лімфоцитів збільшилось на 14,9 %, порівняно з показниками 21 доби, але залишається в межах референтних значень. У тварин, яким використовували плазму, збагачену тромбоцитами на 7 добу відмічали зменшення кількість нейтрофілів на 54,7 %, еозинофілів на 33,7 %, макрофагів на 34 % відносно вихідного стану, а показник кількості лімфоцитів збільшилось на 34 % порівняно з вихідним станом. На 14 добу експерименту кількість нейтрофілів зменшилась на 60,5 %, еозинофілів на 37 %, макрофагів на 44,6 %, а кількість лімфоцитів збільшилась на 10,5 % відносно 7 доби, але знаходились в межах допустимих референтних значень. На 21 добу у тварин цієї групи в зразках синовіальної рідини відмічено поодинокі нейтрофіли, еозинофіли, макрофаги. Слід відмітити, що показник кількості лімфоцитів збільшився на 9,8 % у порівняні з показниками 14 доби, що відповідає фізіологічній нормі складу синовіальної рідини. На 28 добу експерименту у синовіальній рідині відмічено поодинокі нейтрофіли і еозинофіли. При цьому кількість лімфоцитів збільшилась на 19,5 %, щодо 21 доби, що відповідає фізіологічній нормі складу синовіальної рідини. Науковий матеріал експериментальних досліджень становить практичну цінність для застосування плазми збагаченої тромбоцитами за лікування тварин із остеоартрозом

Ключові слова

синовіоцити, нестероїдні протизапальні засоби, хондроїтин, глюкозамін, апарат руху

ЦИТУВАТИ
Gorkava, I., & Malyuk, M. (2023). Effect of different treatments on synovial fluid parameters in experimental osteoarthritis in rabbits. Scientific Reports of the National University of Life and Environmental Sciences of Ukraine, 19(5). https://doi.org/10.31548/dopovidi5(105).2023.018
Використані джерела
  1. Matthew C., & Walsh, N.K. (2006). OSTEOIMMUNOLOGY: Interplay Between the Immune System and Bone Metabolism. Annual Review of Immunology, 24(1), 33-63. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.24.021605.090646.
  2. Shevchenko, S.M. (2023). Clinical and experimental substantiation of implantation of platelet concentrates and their composites with calcium phosphate ceramics for bone fractures in dogs. Bila Tserkva, Ukraine: Bila Tserkva National Agrarian University.
  3. Bielecki, T., & Dohan Ehrenfest, D.M. (2012). Platelet-Rich Plasma (PRP) and Platelet-Rich Fibrin (PRF): Surgical Adjuvants, Preparations for In Situ Regenerative Medicine and Tools for Tissue Engineering. Current Pharmaceutical Biotechnology, 13, 1121-1130. https://doi.org/10.2174/138920112800624292.
  4. Tendinopathies and platelet-rich plasma (PRP): From pre-clinical experiments to therapeutic use. Journal of Stem Cells and Regenerative Medicine, 11(1), 7-17. https://doi.org/10.46582/jsrm.1101003.
  5. Yuyan Wang, D.W. (07 October 2020). Synovial fluid lubricin increases in spontaneous canine cruciate ligament rupture. Department of Clinical Sciences, College of Veterinary Medicine, Cornell University, Ithaca, NY, USA: Scientific Reports. https://doi.org/10.1038/s41598-020-73270-.
  6. Denesiuk, V.I.D. (2019). Osteoarthritis. In Z.R. Kovalenko (Ed.), Internal Medicine. Textbook for students of higher medical education institutions of III-IV accreditation level and postgraduate doctors based on the recommendations of evidence-based medicine (Chapter 6. Rheumatic diseases, p. 960 + 8 p. col.). Kyiv, Ukraine: Morion. doi:ISBN 978-966-2066-74-6.
  7. Luo, Q., Qin, X., Qiu, Y., Hou, L., & Yang, N. (2018). The change of synovial fluid proteome in rabbit surgery-induced model of knee osteoarthritis. American Journal of Translational Research, 10(7), 2087-2101.
  8. Manafi, A., Kaviani Far, K., Moradi, M., Manafi, A., & Manafi, F. (2012). Effects of platelet-rich plasma on cartilage grafts in rabbits as an animal model. World Journal of Plastic Surgery, 1(2), 91-98.
  9. Palamarchuk, L.S. (2000-2013). Dictionary of the Ukrainian Language (in Ukrainian). Kyiv: NAS of Ukraine, A.A. Potebnyi Institute of Linguistics, Institute of the Ukrainian Language.
  10. Studies of synovial fluid. (2018/19). In P.G. Wojciech Bodzon, A.I. Yaremchuk-Kachmarchyk Adriana (Eds.), Internal Medicine. A textbook based on the principles of evidence-based medicine (p. 1632). Krakow, Poland: PRACTICAL MEDICINE.
  11. Caitlin R. & Martinez, PhD (5 October 2016). Preanalytical considerations for joint fluid assessment. Vet Clin North Am Small Anim Pract, 47(1), 111-122. https://doi.org/10.1016/j.cvsm.2016.07.007.
  12. Vets4Pets. (2020). Arthritis in rabbits. Vets4Pets: https://www.vets4pets.com/pet-health-advice/rabbit-advice/rabbit-arthritis/.
  13. Sharifah Zakiah Syed Sulaiman, W.M. (23 February 2022). Proteomic profile of synovial fluid in surgical and chemically induced osteoarthritis in rabbits. https://doi.org/10.7717/peerj.12897.
  14. Parra-Coca, A., B.-M. A. (1 December 2021). Pharmacokinetic evaluation of carprofen delivery from intra-articular nanoparticles: A population modelling approach in rabbits. In N.W. Andrea Erksleben, U.O. Elisabetta Gavini (Eds.), 1st International Electronic Conference on Pharmacy, 78(1), 11. https://doi.org/10.3390/IECP2020-08677.
  15. Stephanie Howe, PhD (27 July 2022). Carprofen (Rimadyl®). Retrieved from PetMD: https://www.petmd.com/pet-medication/rimadyl-carprofen.
  16. Anna Scotto d'Abusco, A.C. (28 March 2008). Effects of intra-articular injection of glucosamine and a peptidyl-glucosamine derivative in a rabbit model of experimental osteoarthritis: a pilot study. https://doi.org/10.1007/s00296-007-0463-x.
  17. Morteza Kalbkhani, S.N. (31 January 2014). Effects of platelet-rich plasma (PRP) in the treatment of experimentally induced osteoarthritis in the rabbit knee joint. In Amarpal (Ed.), Advances in Stem Cells. https://doi.org/10.5171/2014.994022.
  18. Reinhard Gruber, F.W. (9 December 2002). Platelets stimulate bone cell proliferation: involvement of platelet-derived growth factor, microparticles and membranes. Clinical Research in Oral Implants, 13, 529-535. https://doi.org/10.1034/j.1600-0501.2002.130513.x.
  19. Manafi, A., & Kaviani Far, K. (1 July 2012). Effect of platelet-rich plasma on cartilage grafts in rabbits as an animal model. World Journal of Plastic Surgery, 91-98. Retrieved from https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4345432/.
  20. Griffin, X.L. Clinical use of platelet-rich plasma to promote bone healing: A systematic review. In C.U.S. J. Krikler (Ed.), International Journal of Wound Care, 40(2), 158-162. https://doi.org/10.1016/j.injury.2008.06.025.
  21. Lapadula, G., N.B. (22 October 1995). Early ultrastructural changes in articular cartilage and synovial membrane in experimental vitamin A-induced osteoarthritis. Retrieved from PubMed: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/8991991/.
  22. Jim Gourdon, A.J. STANDARD OPERATING PROCEDURE #114. Montréal (Québec), Canada: McGill University Animal Care Committee. Retrieved from https://www.mcgill.ca/research/files/research/114-_rabbit_anesthesia_-_jan_2021.pdf.
  23. Dhurat, R. Principles and Methods of Preparation of Platelet-Rich Plasma: A Review and Author's Perspective. Journal of Cutaneous and Aesthetic Surgery, 189-197. https://doi.org/10.4103/0974-2077.150734.
  24. Sibbald, R. Principles of rabbit anaesthesia for veterinary nurses. The Veterinary Nurse. https://www.theveterinarynurse.com/review/article/principles-of-rabbit-anaesthesia-for-veterinary-nurses.
  25. Di Salvo, A., Giorgi, M., Catanzaro, A., Deli, G., & Della Rocca, G. (2015). Pharmacokinetic profiles of meloxicam in turtles (Trachemys scripta scripta) after single oral, intracoelomic and intramuscular administrations. Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics, 39(1), 102-105. https://doi.org/10.1111/jvp.12254.
  26. Altman, R., & Barkin, R.L. (2009). Topical Therapy for Osteoarthritis: Clinical and Pharmacologic Perspectives. Postgraduate Medicine, 121(2), 139-147. https://doi.org/10.3810/pgm.2009.03.1986.
  27. Bentley, S.A., Marshall, P.N., & Trobaugh, F.E. Jr. (1980). Standardization of the Romanovsky staining procedure: a review. Anal Quant Cytol, March-April, 2(1), 15-18. PMID: 6155098.